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Mitofagia: La Limpieza Mitocondrial que Determina Si Envejeces o Te Deterioras

REDACCIÓN KRECE
📅10 Abr 2026
26 MIN
#ampk#autofagia#disfuncion-mitocondrial#envejecimiento#espermidina#itp#longevidad#metformina
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Red mitocondrial con mitocondrias dañadas siendo degradadas por autofagosomas durante el proceso de mitofagia
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CategoríaLongevidad
DificultadAvanzado
Lectura16 min
CreaciónAbril 2026
VersiónBlog V1.5
AutorIgnacio Rubio

La autofagia se ha convertido en el término de moda de la longevidad. Pero el proceso que realmente determina si tus células envejecen bien o acumulan basura tóxica es más específico: la mitofagia — la degradación selectiva de mitocondrias dañadas. Ejercicio, urolitina A y rapamicina la inducen por vías distintas, con magnitudes distintas y con gaps de evidencia que nadie quiere nombrar.

Autofagia selectiva: cuando la célula recicla sus centrales energéticas

La mitofagia es un proceso de macroautofagia selectiva en el que la célula identifica, aísla y degrada mitocondrias disfuncionales.[1] No es autofagia general — no se engullen porciones aleatorias del citoplasma. Se marcan específicamente las mitocondrias que han perdido potencial de membrana, producen exceso de especies reactivas de oxígeno (ROS) o presentan defectos en la cadena respiratoria.

El proceso sigue una secuencia que ya es clásica: la mitocondria dañada pierde su potencial transmembrana, lo que estabiliza la quinasa PINK1 en la membrana externa. PINK1 recluta a Parkin (una E3 ubiquitin ligasa), que marca la superficie mitocondrial con cadenas de ubiquitina. Los adaptadores autofágicos como P62 reconocen esas marcas y reclutan la maquinaria del autofagosoma — una vesícula de doble membrana que envuelve la mitocondria y la fusiona con el lisosoma para su degradación.[1,3]

La disfunción mitocondrial es uno de los nueve hallmarks del envejecimiento.[11] Dentro de esa disfunción, la caída en la capacidad de mitofagia es el mecanismo que conecta todo: sin reciclaje, las mitocondrias defectuosas se acumulan, generan estrés oxidativo crónico, activan inflammaging, y eventualmente desencadenan apoptosis o senescencia celular.

Mitofagia vs. autofagia general: la autofagia responde a demanda energética (la célula tiene hambre y recicla lo que pilla). La mitofagia responde a oferta — una mitocondria específica se ha dañado y «se ofrece» para ser sacrificada. Ambas comparten la maquinaria final (autofagosomas y lisosomas), pero las señales de inicio son distintas: privación de nutrientes vs. despolarización mitocondrial.[1,3]

El problema de medir un proceso dinámico con herramientas estáticas

En humanos, la mitofagia no se puede medir directamente.[2] Lo que se mide son snapshots moleculares: expresión génica o abundancia de proteínas asociadas (PINK1, Parkin, P62, LC3B, ULK1, FUNDC1) en biopsias musculares, mediante western blot o PCR.[3] Esto da una foto fija del momento de la biopsia, no el flujo real de mitocondrias siendo degradadas.

El otro lado de la ecuación es la dinámica mitocondrial: fusión (OPA-1, MFN-2) y fisión (DRP-1, FIS-1).[4,5,6,7,8] La fisión separa fragmentos dañados para que la maquinaria de mitofagia los capture. Sin fisión previa, no hay mitofagia eficiente.

Los modelos de reportero en ratón

La medición directa solo es posible en modelos animales transgénicos con sondas fluorescentes. Hay tres sistemas relevantes, y no son equivalentes:

ModeloMecanismoVentajaLimitación
MitoQC[9]mCherry-GFP anclado a membrana externa (vía FIS-1). pH neutro = verde+rojo (amarillo). Lisosoma ácido = solo rojo.Cuantificación directa del evento de degradación lisosomal.Requiere microscopía confocal avanzada. Autofluorescencia tisular puede interferir.
MitoTimer[21]Proteína fluorescente temporizada: verde (recién sintetizada) → rojo (madura/estrés oxidativo).Mide la «edad» global del retículo mitocondrial.No mide el evento de mitofagia en sí, sino recambio estructural.
MitoKeimaProteína resistente a proteasas lisosomales. Espectro de excitación cambia según pH (citoplasma vs. lisosoma).Señal bimodal muy sensible.La fijación química destruye el gradiente de pH. Solo funciona en tejido fresco o vivo.
Limitación crítica

Ningún estudio en humanos ha utilizado modelos de reportero de mitofagia. Toda la evidencia en humanos se basa en marcadores indirectos (expresión génica, western blot). Cuando un ensayo clínico dice «aumentó la mitofagia» en humanos, lo que realmente midió fue un incremento en la expresión de genes asociados — no el proceso dinámico real.[2]

El estímulo más potente y el único con medición directa

El ejercicio es la única intervención donde la mitofagia se ha medido directamente mediante modelos de reportero fluorescente en ratón — no solo marcadores indirectos.

+45%
Aumento de mitofagia tras 90 min de carrera en cinta. Medido con MitoQC (ratio verde:rojo) en músculo esquelético de ratón. Laker et al., 2017.[20]

Utilizando MitoTimer, el mismo grupo documentó un aumento superior al 400% en los puncta rojos puros (mitocondrias siendo degradadas activamente) a las 6 horas post-ejercicio.[20] La mitofagia volvió a niveles basales a las ~24 horas, lo que establece una regla clínica directa: la mitofagia inducida por ejercicio requiere repetición diaria o casi diaria para mantener el recambio mitocondrial.

El mecanismo: AMPK → ULK1

El ejercicio activa la vía AMPK/ULK1. La caída del ratio ATP:AMP durante el esfuerzo activa AMPK, que fosforila directamente a ULK1 (Serina 555), iniciando el ensamblaje del autofagosoma.[20] Para confirmarlo, Laker et al. utilizaron ratones knockout de la subunidad α2 de AMPK: tras 90 minutos de ejercicio, no se detectó mitofagia alguna.[20]

En 2021, Drake et al. demostraron que AMPK no solo se activa en el citosol — se transloca físicamente a la membrana mitocondrial tras el ejercicio o el estrés energético. Esta localización mitocondrial de AMPK es un hallazgo nuevo que cambia la comprensión del mecanismo: AMPK actúa directamente sobre la mitocondria, no solo desde el citoplasma.[22]

Implicación clínica: en un estudio en humanos, 30 minutos de ejercicio de alta intensidad activaron la vía AMPK/ULK1 hasta tal punto que superó por completo el efecto de 16 horas de ayuno — no hubo diferencias en mitofagia entre sujetos que habían ayunado y los que no. El ejercicio maximizó la respuesta por sí solo. Para manipular la mitofagia en consulta, el ejercicio es la palanca más potente y directa — no el ayuno.

Mitofagia selectiva sin inhibir mTOR: la promesa y las grietas

La urolitina A (UA) es un posbiótico derivado de los elagitaninos de la granada, sintetizado por bacterias intestinales específicas (Gordonibacter urolithinfaciens, Ellagibacter isourolithinifaciens). Solo el 30-40% de la población posee la microbiota necesaria para producirla endógenamente, lo que justifica la suplementación directa.[23,24]

+104%
Aumento de mitofagia en células musculares tras 24h de exposición a urolitina A. Medido con MitoKeima. Ryu et al., 2016.[25]

La investigación de UA proviene del laboratorio de Johan Auwerx (EPFL, Lausana) en colaboración con Amazentis (Nestlé Health Science). El recorrido traslacional es sólido: en C. elegans, UA extendió la vida un 45% por mejora de la función mitocondrial.[25] En ratones, humanos de mediana edad y adultos mayores, se han documentado mejoras en expresión génica de mitofagia, ciclo TCA y oxidación de ácidos grasos.[25,26,27]

Evidencia en humanos (N4)

Un ensayo controlado aleatorizado (1.000 mg/día durante 4 meses) en adultos de mediana edad reportó mejoras de ~12% en fuerza muscular y ~12% en resistencia.[26] Biopsias musculares mostraron un incremento significativo en genes relacionados con mitofagia, ciclo TCA y oxidación de ácidos grasos.[26] En adultos mayores, un ensayo publicado en JAMA Network Open confirmó mejoras en resistencia muscular y salud mitocondrial.[27]

El mecanismo diferencial

A diferencia de la rapamicina, la UA no inhibe mTOR. Actúa directamente sobre la mitocondria dañada, induciendo mitofagia selectiva y biogénesis mitocondrial simultáneamente.[25] Esto significa que no compromete el anabolismo ni la función inmunitaria — un perfil de seguridad radicalmente distinto al de la rapamicina.

Gaps de evidencia

Financiación: todos los ensayos clínicos de UA han sido financiados por Amazentis/Timeline, la empresa comercializadora. Comparador activo: ningún ensayo ha comparado UA frente a ejercicio físico pautado. Endpoints: la evidencia humana descansa fuertemente sobre expresión génica (endpoint subrogado), no sobre prevención funcional de sarcopenia a largo plazo. Microbioma: la variabilidad individual en la producción endógena de UA es un confusor enorme que complica la extrapolación.[23,24]

La molécula con mejor expediente preclínico del planeta

La rapamicina induce autofagia mediante la inhibición de mTORC1. Lo que se ha investigado menos es su efecto específico sobre mitofagia — no solo autofagia general.

+125%
Aumento de mitofagia en modelo de enfermedad mitocondrial. 8 mg/kg/día durante 70 días. Medido con MitoQC. McWilliams et al., 2022.[28]

El estudio de McWilliams (Cell Metabolism, 2022) utilizó el modelo MitoQC que él mismo desarrolló durante su doctorado.[9] En un modelo de enfermedad mitocondrial con defectos en la cadena respiratoria y acumulación masiva de mitocondrias dañadas («ragged-red fibers»), la rapamicina no solo aumentó la mitofagia un 125%, sino que redujo la acumulación patológica de P62 en un ~90%, restaurando el flujo autofágico a niveles normales.[28]

El mecanismo identificado: disminución de S6 fosforilada (un marcador downstream de mTOR), lo que confirma que el efecto es mediado por la supresión de mTORC1.[28]

Mitofagia cerebral: ratones jóvenes vs. viejos

En el cerebro, la rapamicina muestra un perfil diferenciado por edad. El grupo de Benjamin Miller (Oklahoma Medical Research Foundation) utilizó trazadores de isótopos estables para medir síntesis de proteínas mitocondriales cerebrales:[31]

VariableRatones jóvenesRatones viejos
Síntesis proteínas mitocondrialesSin efecto+40%
mTORSin cambioSin cambio
AMPKSin cambioSin cambio
Agregados proteicos (Aβ, tau)Sin cambioSin cambio

El hallazgo es contra-intuitivo: rapamicina en ratones viejos aumentó un 40% la biogénesis mitocondrial cerebral sin alterar mTOR, AMPK ni placas amiloides.[31] Esto sugiere una vía independiente de mTOR en el cerebro envejecido que aún no se comprende bien.

Por el lado de la degradación, Wang et al. (2021) midieron co-localización de TOM20 (membrana externa mitocondrial) con LC3B (marcador del autofagosoma) en un modelo de Alzheimer: la rapamicina a 1 mg/kg/día durante 8 semanas aumentó la mitofagia cerebral un 400%, concurrente con mejoras en aprendizaje, memoria y plasticidad sináptica.[32]

El expediente del ITP

El Interventions Testing Program (ITP) del NIA/NIH — el programa de longevidad preclínica más riguroso del mundo, con tres colonias independientes — posiciona a la rapamicina como el compuesto con mayor extensión de vida documentada:

Dosis (ppm)CohorteInicioMachosHembras
14C2005/C20069 meses+8-10%+17-22%
42C20099 meses+22%+28%
14C200920 meses+20%+13%
42 intermitenteC20159 meses+8-10%+8-10%
14.7 + Acarbosa 1000C20179 meses+37%Pendiente

Dos datos críticos: el inicio tardío (20 meses, equivalente a 60-65 años humanos) funcionó casi tan bien como el inicio temprano. Y la combinación rapamicina + acarbosa logró el mayor incremento de lifespan jamás documentado en el ITP: +37% en machos.

Todo N1. La rapamicina tiene el expediente preclínico más robusto del mundo, pero sigue siendo evidencia animal. Los ensayos en humanos para longevidad están en fases muy tempranas. Las dosis geroprotéctoras propuestas (5-6 mg/semana, pauta intermitente) no están validadas por ningún ECA. Más contexto en nuestra guía de rapamicina.

El fármaco que bloquea lo que debería potenciar

La metformina inhibe parcialmente el Complejo I de la cadena respiratoria mitocondrial, altera el ratio AMP:ATP y activa AMPK secundariamente. En teoría, debería inducir mitofagia. Drake et al. (2021) demostraron que efectivamente induce localización mitocondrial de AMPK, igual que el ejercicio.[22]

Pero hay dos problemas:

Fracaso en el ITP

Metformina en monoterapia (1000 ppm, cohorte C2011, inicio 9 meses) no extendió la vida en ratones sanos: +7% en machos (p=0,35), 0% en hembras (p=0,79).[ITP] La molécula que millones de personas toman como «píldora de longevidad» fracasó en el programa más riguroso del mundo.

La sinergia solo aparece al combinarla con rapamicina: MetRapa (metformina 1000 ppm + rapamicina 14 ppm) logró +23% en machos y +23% en hembras. La sinergia es real en machos (donde rapamicina sola daba 8-10%), pero en hembras es redundante (rapamicina sola ya daba 17-22%).

Antagonismo con ejercicio (blunting effect)

El dato más relevante para la práctica clínica: la metformina bloquea las adaptaciones mitocondriales del ejercicio. Un ensayo controlado aleatorizado en adultos mayores (Peterson et al.) comparó ejercicio + metformina vs. ejercicio + placebo durante 12 semanas. El grupo de metformina experimentó una atenuación severa: más del 50% de reducción en la mejora de VO2 máx, bloqueo del incremento en respiración mitocondrial muscular, y anulación de la mejora en sensibilidad a la insulina que normalmente induce el ejercicio.

>50%
Reducción en la mejora de VO2 máx cuando se combina ejercicio con metformina. Ensayo controlado aleatorizado en adultos mayores. Peterson et al. N4

El mecanismo es claro: la metformina inhibe el Complejo I, que es exactamente la señal que el ejercicio utiliza para disparar la biogénesis mitocondrial y la mitofagia. Tomar metformina antes de entrenar es como pisar el acelerador y el freno a la vez.

Posición clínica

Para un paciente diabético sedentario, la metformina tiene sentido metabólico. Para un paciente que entrena regularmente y busca optimización mitocondrial, la metformina es contraproducente. La lógica de «más intervenciones = mejor» se estrella contra la bioquímica: cuando dos estímulos compiten por la misma vía pero en direcciones opuestas, el resultado no es sinergia sino cancelación.

El segundo pelotón: evidencia real pero menos robusta

Espermidina

La espermidina es una poliamina endógena que induce autofagia y mitofagia mediante inhibición de la acetiltransferasa EP300.[15] El estudio de Eisenberg et al. (Nature Medicine, 2016) demostró extensión de vida en ratones con un mecanismo específicamente dependiente de mitofagia cardíaca — no autofagia general. En ratones con los genes de autofagia anulados (Atg5 knockout), la espermidina no tuvo ningún efecto cardioprotector, demostrando que su poder depende al 100% de la capacidad de la célula para reciclar mitocondrias dañadas.[15]

Los datos epidemiológicos (alta ingesta dietética correlaciona con mayor esperanza de vida) son prometedores pero observacionales. Faltan ECA de suplementación aislada.

Restricción calórica

La restricción calórica activa AMPK, suprime mTOR e induce mitofagia. Pero la respuesta es extraordinariamente heterogénea: en modelos animales crónicos, solo un tercio de los ratones se benefició; otro tercio tuvo respuestas neutras; y el último tercio experimentó respuestas abiertamente perjudiciales, dependiendo del background genético. No es una intervención universal.

Precursores de NAD+ (NR y NMN)

El Nicotinamída Ribósido (NR) y el NMN son precursores de NAD+, cofactor esencial para la cadena respiratoria y las sirtuinas. En ratones, las dosis han sido masivas (400-500 mg/kg) con resultados impresionantes en biogénesis mitocondrial.[datos fuente]

En humanos, la evidencia ha fracasado consistentemente. Un estudio en 40 hombres obesos con 2.000 mg de NR durante 12 semanas no encontró ninguna mejora en sensibilidad a la insulina, daño oxidativo ni función mitocondrial. Biopsias musculares en ensayos de 4-6 semanas mostraron que la suplementación oral con NR ni siquiera logró incrementar los niveles intramusculares de NAD+. La desconexíon traslacional es total: lo que funciona a 500 mg/kg en ratones no funciona a 2.000 mg totales en humanos.

Antioxidantes: la intervención que destruye lo que intenta proteger

Las megadosis de vitaminas C y E bloquean los picos transitorios de ROS que las mitocondrias necesitan como señal de alarma para disparar la biogénesis y la mitofagia. Los antioxidantes sintéticos no solo no mejoran la salud mitocondrial — la sabotean activamente al eliminar la señal de hormesis.

Qué sabemos, qué no sabemos, y qué finge saber el mercado

IntervenciónMagnitudMétodoModeloNivel
Ejercicio (90 min carrera)+45% (MitoQC), +400% (MitoTimer)Reportero fluorescente directoRatónN1
Urolitina A (24h exposición)+104% (MitoKeima)Reportero fluorescente directoCélulas muscularesN0
Urolitina A (1000 mg/d, 4 meses)+12% fuerza, +12% resistenciaEndpoints funcionales + expresión génicaHumanos (mediana edad)N4
Rapamicina (8 mg/kg/d, 70 días)+125%, –90% P62MitoQC + western blotRatón (enfermedad mitocondrial)N1
Rapamicina (1 mg/kg/d, 8 semanas)+400% co-localización TOM20/LC3BInmunofluorescenciaRatón (Alzheimer)N1
EspermidinaExtensión lifespan, cardioprotecciónDependiente de Atg5 (mitofagia)RatónN1
NR/NMN (2000 mg, 12 sem)Cero efecto mitocondrialBiopsias muscularesHumanos (obesos)N4

Los tres gaps que nadie quiere nombrar

Gap 1 — Ejercicio + Urolitina A: no existe ningún ECA que combine ambas intervenciones. No sabemos si UA aporta algo adicional a un paciente que ya entrena, o si sus beneficios se limitan a rescatar la maquinaria oxidativa de individuos sedentarios.

Gap 2 — Ejercicio + Rapamicina en humanos: no hay datos — ni en humanos ni en roedores — sobre si las dosis geroprotéctoras de rapamicina bloquean la hipertrofia muscular o la reparación tisular post-entrenamiento. Con metformina sabemos que sí (Peterson et al.). Con rapamicina, nadie lo ha medido.

Gap 3 — Combinaciones triple: la teoría de que dieta cetogénica + metformina + ayuno constituiría una «terapia metabólica hiperpotente» por convergencia en AMPK y mTOR no tiene un solo estudio clínico que la respalde. Es empirismo mecanístico puro.

La mitofagia no es un indicador más — es el indicador

La capacidad de una célula para reciclar sus propias mitocondrias defectuosas determina su trayectoria de envejecimiento más que cualquier otro marcador aislado. Sin mitofagia eficiente, no hay flexibilidad metabólica posible.

El ejercicio es la base no negociable. Es la única intervención con medición directa de mitofagia (MitoQC, MitoTimer) y con evidencia funcional en humanos a través de la vía AMPK/ULK1. Frecuencia mínima: diaria o casi diaria, porque la mitofagia inducida por ejercicio vuelve a niveles basales en ~24 horas. Cualquier protocolo farmacológico o nutricional que no se construya sobre una base de ejercicio regular está construido sobre arena.

La urolitina A es el suplemento con mejor expediente para mitofagia selectiva. Tiene ECA publicados en revistas de alto impacto (Nature Metabolism, JAMA), endpoints funcionales positivos (fuerza, resistencia), y un mecanismo que no compromete mTOR. Pero los ensayos son todos de Amazentis, no hay comparador activo contra ejercicio, y la variabilidad del microbioma es un confusor no resuelto. KRECE la considera una intervención coadyuvante creíble para poblaciones sedentarias o frágiles — no un sustituto del estímulo mecánico.

La rapamicina tiene el mayor expediente preclínico de la historia de la longevidad. Los datos del ITP (hasta +37% con combinación rapamicina + acarbosa) y los estudios de mitofagia específica (McWilliams +125%, Wang +400% en cerebro) son extraordinarios. Pero sigue siendo N1. Las dosis humanas son extrapolaciones, la pauta intermitente no está validada por ECA, y el trade-off mTOR (supresión de anabolismo muscular) es real y no resuelto.

La metformina como geroprotéctor en sanos es un error. Fracasó en el ITP. Bloquea las adaptaciones del ejercicio (Peterson et al., N4). Su valor está en la sinergia con rapamicina (MetRapa +23%) y en el paciente diabético sedentario, no en el paciente que entrena. Prescribir metformina a un paciente activo que busca optimización mitocondrial es prescribirle un inhibidor de lo que está intentando mejorar.

Los precursores de NAD+ no han demostrado nada en humanos. La desconexíon traslacional entre ratones y humanos es total. Hasta que un ECA demuestre que NR o NMN mejoran la función mitocondrial real (no génica) en humanos, su uso es esperanza, no evidencia.

Jerarquía KRECE para mitofagia: ejercicio > urolitina A > rapamicina (supervisado) > espermidina > restricción calórica cíclica. Todo lo demás necesita más datos.

Referencias

1Youle RJ, Narendra DP. Mechanisms of mitophagy. Nat Rev Mol Cell Biol. 2011.
2Hamacher-Brady A, Brady NR. Mitophagy programs: Mechanisms and physiological implications. Cell Mol Life Sci. 2016;73:775-795.
3Ashrafi G, Schwarz TL. The pathways of mitophagy for quality control and clearance of mitochondria. Cell Death Differ. 2013;20:31-42.
4Liu YJ, et al. Mitochondrial fission and fusion: A dynamic role in aging. Mech Ageing Dev. 2020.
5Tezze C, et al. Age-associated loss of OPA1 in muscle impacts metabolic homeostasis. Cell Metab. 2017;25:1374-1389.
6Bell MB, et al. Adult skeletal muscle deletion of Mitofusin 1 and 2 impedes exercise performance. J Appl Physiol. 2019;126:341-353.
7Favaro G, et al. DRP1-mediated mitochondrial shape controls calcium homeostasis and muscle mass. Nat Commun. 2019;10:1-17.
8Losón OC, et al. Fis1, Mff, MiD49, and MiD51 mediate Drp1 recruitment in mitochondrial fission. Mol Biol Cell. 2013;24:659-667.
9McWilliams TG, et al. Mito-QC illuminates mitophagy and mitochondrial architecture in vivo. J Cell Biol. 2016;214:333-345.
10McWilliams TG, Ganley IG. Investigating mitophagy and mitochondrial morphology in vivo using mito-QC. Methods Mol Biol.
11Schmauck-Medina T, et al. New hallmarks of ageing: a 2022 Copenhagen ageing meeting summary. Aging. 2022.
12Sun N, Youle RJ, Finkel T. The mitochondrial basis of aging. Mol Cell. 2016.
13Plummer JD, Johnson JE. Extension of cellular lifespan by methionine restriction involves mitophagy. Front Cell Dev Biol. 2019;7.
14Palikaras K, et al. Coordination of mitophagy and mitochondrial biogenesis during ageing in C. elegans. Nature. 2015.
15Eisenberg T, et al. Cardioprotection and lifespan extension by the natural polyamine spermidine. Nat Med. 2016;22:1428-1438.
16Kerr JS, et al. Mitophagy and Alzheimer’s disease: Cellular and molecular mechanisms. Trends Neurosci. 2017;40:151-166.
17Vásquez-Trincado C, et al. Mitochondrial dynamics, mitophagy and cardiovascular disease. J Physiol. 2016;594:509-525.
18Ringholm S, et al. Impact of aging and lifelong exercise training on mitochondrial function. J Gerontol A. 2022.
19Granata C, et al. Mitochondrial adaptations to high-volume exercise training are rapidly reversed. FASEB J. 2016;30:3413-3423.
20Laker RC, et al. AMPK phosphorylation of Ulk1 is required for targeting of mitochondria to lysosomes in exercise-induced mitophagy. Nat Commun. 2017;8:1-13.
21Laker RC, et al. A novel MitoTimer reporter gene for mitochondrial content, structure, stress, and damage in vivo. J Biol Chem. 2014;289:12005-12015.
22Drake JC, et al. Mitochondria-localized AMPK responds to local energetics and contributes to exercise and energetic stress-induced mitophagy. PNAS. 2021;118:e2025932118.
23D’Amico D, et al. Impact of the natural compound urolithin A on health, disease, and aging. Trends Mol Med. 2021.
24Singh A, et al. Direct supplementation with urolithin A overcomes limitations of dietary exposure and gut microbiome variability. Eur J Clin Nutr. 2022;76:297-308.
25Ryu D, et al. Urolithin A induces mitophagy and prolongs lifespan in C. elegans and increases muscle function in rodents. Nat Med. 2016;22:879-888.
26Singh A, et al. Urolithin A improves muscle strength, exercise performance, and biomarkers of mitochondrial health in middle-aged adults. Cell Rep Med. 2022.
27Liu S, et al. Effect of urolithin A supplementation on muscle endurance and mitochondrial health in older adults. JAMA Netw Open. 2022;5:e2144279.
28Mito T, et al. Mosaic dysfunction of mitophagy in mitochondrial muscle disease. Cell Metab. 2022;34.
29Ubaida-Mohien C, et al. Unbiased proteomics, histochemistry, and mitochondrial DNA copy number reveal better mitochondrial health in high functioning octogenarians. eLife. 2022;11.
30Kaeberlein M, Galvan V. Rapamycin and Alzheimer’s disease: Time for a clinical trial? Sci Transl Med. 2019;11.
31Reid JJ, et al. Brain protein synthesis rates in the UM-HET3 mouse following treatment with rapamycin or rapamycin with metformin. J Gerontol A. 2020;75:40.
32Wang H, et al. Rapamycin activates mitophagy and alleviates cognitive and synaptic plasticity deficits in a mouse model of Alzheimer’s disease. J Gerontol A. 2021;76:1707-1713.
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